Актуальность проблемы. Несмотря на достигнутые успехи в лечении острых хирургических заболеваний органов брюшной полости, перитонит продолжает занимать ведущее место среди причин летальных исходов (1). Актуальность этой проблемы объясняется, с одной стороны частотой и тяжестью течения процесса перитонита, с другой — снижением эффектности антибактериальной терапии, как основного оружия в борьбе с хирургической инфекцией и необходимостью поисков новых путей и методов профилактики и лечения перитонита (3).
Инфицирование брюшной полости играет значительную роль в патогенезе тяжелых расстройств гемодинамики и функционального состояния внутренних органов и систем, вплоть до развития необратимых функциональных расстройств (2).
Цель иисследования. Изучение микробной флоры брюшной полости для улучшения результатов лечения перитонитов.
Методы исследования. Изучение содержимого брюшной полости проводились согласно методике кафедры. Специальное приспособление (полихлорвиниловая трубка и шелковая нитка) было использовано для взятия материала (содержимое брюшной полости) и изучения микрофлоры. Во время операции вышеуказанное устройство оставляется в желаемой области брюшной полости. Можно использовать сразу несколько устройств. Для этого в стерильных условиях через тонкую полихлорвиниловую трубку проводится шелковая нитка, стерилизованная физическими методами (химические и другие методы применять нельзя, т. к. искажаются результаты, вследствие воздействия химических препаратов на микроорганизмы). Для проведения нитки через трубку применяется тонкая металлическая струна, сложенная вдвое. Устройство можно оставлять в брюшной полости одни, двое и более суток.
Пропитанная жидкостью и микробами шелковая нитка удаляется в желаемый срок. При удалении нитки она подтягивается и полностью проводится в просвет трубки из брюшной полости, а затем вместе с трубкой удаляется. Определение чувствительности микрофлоры к наиболее часто применяемым антибиотикам и антисептическим веществам производили диско-диффузионным методом.
За 12 лет в хирургическом отделении нашей клиники после оперативных вмешательств по поводу различных форм перитонита получили комплексное лечение 298 больных — мужчин — 192 (64, 4 %), женщин-106 (35, 6 %) в возрасте от 16 до 76 лет.
Причинами возникновения перитонита у анализируемых больных были: острый аппендицит — у 169 (56,7 %), острый холецистит — у 21(7,1 %), перфоративная язва желудка и двенадцатиперстной кишки у 79 (26, 5 %) и гинекологические заболевания — у 29 (9,7 %). Следовательно, основным источником перитонитов был острый аппендицит, что согласуется с данными литературы (3).
Реактивная стадия перитонита была у 137 (46 %), токсическая — у 136 (45, 6 %) и терминальная — у 25 (8,4 %) больных. Следовательно, у большинства была реактивная и токсическая стадия заболевания. При местном перитоните летальных исходов не наблюдалось, а при разлитом перитоните — от 2,9 % до 8,57 %. При поступлении в стационар у 184 (88,0 %) из 209 обследованных больных высеяна монокультура, у 25 (12 %) — микробные ассоциации, у 5 (2,4 %) — роста не было.
Кишечная палочка в монокультуре высеяна у 106 (50,7 %) больных, золотистый стафилококк — у 30 (14,4 %) больных, стрептококк — у 21 (10,0 %) больных. Протей, энтерококк и синегнойная палочка высеялись у 27 (12,9 %) больных. Во всех трех микробных ассоциациях присутствовала кишечная палочка. Выделенная флора в 61,67 % случаев была устойчивой к тетрациклину в 56,66 % случаев к метициллину, в 53,82 % случаев к бензилпенициллину, в 51,38 % случаев к раствору фурацилина (1:500), менее выраженная устойчивость отмечена к стрептомицину и неомицину (48,20 %; 44,14 %).Вегетирующая флора обладает высокой чувствительностью к гентамицину (75,11 %), клафорану (71,46 %), канамицину (70,14 %), ампициллину (69,01 %), левомицетину (69,91 %), эритромицину (63,83 %) и ампиоксу (63,06 %).
В 44,3 % случаев флора была устойчивой к 1–2 антибиотикам, в 29,5 % — к 3–4.в 19,8 % — к 15–7, в 13,2 % — к 8 и более антибиотикам одновременно и лишь 6,8 % выделенных штаммов оказались чувствительными ко всем антибиотикам.
Выделенные анаэробы характеризовались высокой чувствительностью к метронидазолу, тинидазолу, левомицетину, умеренной — к пенициллину (кроме бактериоидов), тетрациклину, фуразолидону, были устойчивыми к аминогликозидным антибиотикам (канамицину, гентамицину) и полимиксину.
Таким образом, гнойный перитонит в современных условиях отличается с бактериологической точки зрения сочетанной флорой со все возрастающими патогенными свойствами. При этом кишечная палочка (E.Coli) сохраняя главенствующее значение в микробной этиологии перитонита, характеризуется повышением вирулентности ряда штаммов, которые ранее приближались к сапрофитам, что указывает на снижение иммуннозащитной функции организма. Большая часть анаэробных микробных ассоциаций перитонеального экссудата позволяет говорить о ведущей роли эндогенных микроорганизмов в патогенезе перитонита.
Литература:
- Абдоминальная хирургическая инфекция: клиника, диагностика, антимикробная терапия. «Практическое руководство». В. С. Савельев, 2006 г.
- Келина Н. Ю. Кулюцина Е. Р. Безручко Н. В. Изменение гематологических показателей в реактивной стадии разлитого перитонита в ранний послеоперационный период. Вест. интенсив. терапии. 2002; 2: 32–35.
- Хирургия острого живота. «Научное издание». Г. И. Синенченко 2007 г.
- Избранный курс лекций по гнойной хирургии. «Учебное пособие для врачей». В. Д. Федоров, А. М. Светухин. 2005 г.
