Исследован апоптоз нейтрофилов и лимфоцитов крови у молодых и старых самцов лабораторных животных (мыши, крысы) при иммобилизационном и гипогидратационном стрессе и введении антиоксидантов. Установлено увеличение числа лимфоцитов и нейтрофилов с явными признаками апоптоза под влиянием стресса и уменьшение апоптозных элементов при введении антиоксидантов. Сочетание факторов стресс + антиоксидант привели к снижению апоптоза по сравнению с воздействием чистого стресса, что свидетельствует о стресс-протекторном эффекте антиоксидантов и о их антиапоптическом действии.
Ключевые слова: апоптоз, нейтрофилы, лимфоциты, витамин Е, эмоксипин, иммобилизационный стресс, гипогидратационный стресс.
Проблема старения, гибели и дифференцировки клеток является одной из центральных проблем современной биологии. В процессе эволюции образовалась сложная система контроля за постоянством числа клеток, процесс клеточного суицида известен как апоптоз. Апоптоз является естественным процессом замены тканевых структур и уничтожения состарившихся и дефективных клеток [5, с.493–523; 13, с.44].
Апоптозу принадлежит роль и в развитии процесса старения [8, с. 1694–1717]. К старости организм утрачивает способность верно реагировать на сигналы апоптоза, что приводит к развитию различных патологий, однако, увеличение гибели клеток, необходимо для нормальной жизнедеятельности организма [11, с.633–647; 2, с.7]. Исследования последних лет показали, что патогенез многих болезней, в том числе рака, лейкозов и вирусных инфекций, связан с неспособностью клеток запускать механизм апоптоза [12, с.787–789]. Такие болезни, как СПИД, остеопороз, апластическая анемия, напротив, связаны с повышенной способностью клеток к апоптозу [7, с.330–34. В настоящее время доказана прямая связь между нарушением регуляции апоптоза и заболеваниями иммунной системы.
В последние десятилетия накоплен большой опыт в изучении механизмов апоптоза различных клеток, однако вопрос о гибели клеток белой крови на поздних этапах онтогенеза изучен не полностью. Известно, что процессы апоптоза и старения взаимосвязаны, и влияние на один из них влечет изменение другого. Однако недостаточная изученность и отсутствие точного представления о механизмах регуляции апоптоза клеток белой крови при старении не дает возможность полноценно использовать антиоксиданты как геро- и стрессопротекторы в клинической гериатрии. В связи с этим представляется актуальным исследовать механизмы регуляции апоптоза клеток белой крови при старении, и эффекты антиоксидантов в контроле и при стрессе у разновозрастных животных.
Цель данного исследования- изучить протекторное действие антиоксидантов различной природы (природного — α-токоферола и синтетического — эмоксипина) на физиологический и стресс-индуцированный апоптоз клеток белой крови у лабораторных животных, на разных этапах онтогенеза.
Задачи исследования:
- Выявить особенности физиологического апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов у молодых и старых мышей и крыс.
- Изучить влияние иммобилизационного и гипогидратационного стресса на уровень апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов, и их особенности при старении.
- Изучить влияние природного антиоксиданта — α-токоферола и синтетического антиоксиданта — эмоксипина на динамику апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов у мышей и крыс разных возрастных групп.
- Изучить влияние стресс-протекторного эффекта α-токоферола и эмоксипина в условиях стресса на уровень апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов у лабораторных животных (мыши, крысы) на этапах онтогенеза.
Материалы иметоды
В эксперименте были использованы два вида животных — беспородные белые мыши и беспородные белые крысы двух возрастных групп (молодые и старые). Животные содержались в стандартных условиях вивария при естественном освещении. Все эксперименты выполнены в весеннее–летний период.
Экспериментальный материал получен от двух серий опытов.
I серия опытов выполнена на самцах мышей (90 шт.) двух возрастных групп: молодые-2,5 месяца, средней массой 22,6 г. и стареющие-14 месяцев, средней массой 28,6 г. Различия по массе тела были достоверны.
При проведении опытов использовалась экспериментальная модель — гипогидратационный стресс (водная депривация) в условиях нормальной освещенности. Мыши находились без доступа к воде в течение 4 — х дней.
Животные получали α-токоферол и комплекс α-токоферол и витамин С в качестве антиоксидантов для проверки их анти-стрессорных свойств и антиоксидантных качеств.
Все животные в соответствии с целями и задачами исследования были подразделены на 5 групп (соответственно для каждой возрастной группы):
- Интактные (контроль);
- Мыши, подвергшиеся гипогидратационному стрессу в течение четырех дней;
- Мыши, получавшие масляный 10 % раствор D,L- α-токоферолацетата per os ежедневно в течение 14 дней, в дозе 1 мг./100г. массы тела, и подвергнутые в течение последних 4 дней приема α-токоферола воздействию гипогидратационного стресса.
- мыши, получавшие масляный 10 % раствор D,L- α-токоферолацетата per os ежедневно в течение 14 дней, в дозе 1 мг./100г. массы тела;
- Мыши, получавшие масляный 10 % раствор D,L- α-токоферолацетата в дозе 1 мг./100г. массы тела и витамин С в дозе1мг/100 г. массы тела per os в течении 14 дней и подвергнутые в течение последних 4 дней приема витаминов гипогидратационному стрессу.
II серия опытов поставлена на самцах крыс (94 шт.) двух возрастов, молодые (5,5 мес.) средней массой 105,5 г. и старые (27 мес.) средней массой 217,2 г. Различия по массе тела были достоверны.
Экспериментальная модель — иммобилизационный стресс. Животных помещали в тесную пластиковую камеру, ограничивающую их движения, на 2 часа при комнатной температуре. По окончанию опытов крыс декапитировали после предварительной наркотизации внутрибрюшинным введением этаминала натрия (4 мг/ 100 г массы тела животного).
Животные получали α-токоферол и эмоксипин в качестве антиоксидантов для проверки их анти-стрессорных свойств и антиоксидантных качеств.
Животные были подразделены на следующие экспериментальные группы:
- Интактные животные (контроль);
- Крысы, подвергшиеся иммобилизационному стрессу в пластиковых цилиндрах соответствующего размера в течение 7 дней по 2 ч. в день;
- Животные, получавшие 10 % масляный раствор D,L- α-токоферолацетата per os в дозе 1мг/100 г. массы тела ежедневно в течение 14 дней;
- Крысы, получавшие масляный 10 % раствор D,L- α-токоферолацетата per os ежедневно в течение 14 дней, в дозе 1 мг./100г. массы тела, и подвергнутые в течение последних 7 дней введения витамина действию иммобилизационного стресса;
- Животные, которым внутримышечно вводили 1 % р-р эмоксипина в дозе 1мг/ 100г. массы тела в течение 7 дней;
- Крысы, которым внутримышечно вводили 1 % р-р эмоксипина в дозе 1мг/ 100г. массы тела в течение 7 дней, и подвергнутые в этот период воздействию иммобилизационного стресса.
Доза α-токоферола выбрана на основании данных об оптимальном действии витамина Е как антиоксиданта при разовом введении не более 2 мг/100 г. массы тела [3, с.163.
Доза эмоксипина подобрана экспериментально по сходному антиоксидантному действию α-токоферола в дозе 1мг/100г массы тела, т.к литературные данные не содержат сведений о терапевтических дозах для лабораторных животных.
Все экспериментальные данные обрабатывались статистически при помощи определения средней арифметической, её ошибки и достоверности различия между средними сравниваемых групп с помощью критерия t/p Стьюдента [1, с.160]. Достоверным являлись отличия при уровне значимости р<0,05.
Определение уровня апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов проводили с помощью световой и флуоресцентной микроскопии.
Обсуждение результатов исследования
В наших экспериментах количество апоптозных нейтрофилов и лимфоцитов в контроле неодинаково: у старых животных их число значительно выше, чем у молодых мышей и крыс.
Воздействие стресса (гипогидратационный и иммобилизационный) резко повысило уровень апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов в обеих возрастных группах животных (мыши, крысы) в сравнении с контрольными грызунами.
Одним из факторов увеличения уровня апоптоза при старении может быть высокий уровень свободнорадикального окисления [5, с.493–523; 13, с.44]. В настоящее время все больший интерес вызывают антиоксиданты как вещества, способствующие замедлению темпов старения, предупреждению индукции апоптоза при интенсификации свободнорадикальных процессов. Особый интерес представляют те противоокислительные вещества, которые функционируют в живом организме, т. е. биоантиоксиданты, поскольку они играют чрезвычайно важную роль в защите многих биологических структур от свободнорадикального окисления [9, с.90–97]. Прямых доказательств о влиянии α-токоферола на апоптоз клеток крови в литературе мы не обнаружили, однако имеются данные об ингибировании апоптоза α-токоферолом, вызванного различными воздействиями в кератиноцитах, опухолевых клетках печени [10, с.121–130, а также данные о снижении уровня апоптоза витамином Е в ооцитах мышей после воздействия никотина [4, с.880–884].
У молодых и старых животных при введении α-токоферола обнаружена некоторая разница в динамике апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов. У молодых мышей наблюдалась лишь тенденция к снижению уровня апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов по сравнению с интактными, в то время как у старых животных произошло достоверное его снижение. При введении синтетического антиоксиданта эмоксипина отмечена тенденция к снижению уровня апоптоза изучаемых клеток у разновозрастных крыс.
Предварительное двухнедельное введение α-токоферола и комплекса α-токоферол и витамин С животным перед стрессированием способствовало снижению уровня апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов по сравнению с воздействием стресса без предварительного введения витаминов в обеих возрастных группах мышей. При аналогичном экспериментальном воздействии синтетическим антиоксидантом эмоксипином наблюдалась лишь тенденция к снижению уровня апоптоза у разновозрастных животных. Отмечено достоверное различие в динамике апоптоза лимфоцитов у молодых и старых лабораторных грызунов (мыши, крысы) при введении в рацион животных перед стрессированием антиоксидантов различной природы и комплекса витаминов (увеличение уровня апоптоза у старых животных).
Таким образом, результаты исследования свидетельствуют о том, что апоптоз нейтрофилов и лимфоцитов интенсифицируется с возрастом. α-токоферол оказывает более выраженное антиапоптическое действие на позднем этапе онтогенеза. В условиях стресса α-токоферол снижает стрессорное воздействие на организм, уменьшает уровень апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов, вне зависимости от возраста, но более выражено у старых животных. Эмоксипин в аналогичных условиях менее эффективен как антиоксидант.
Таблица 1
Влияние стресса ивитаминов-антиоксидантов на уровень апоптоза нейтрофилов илимфоцитов мышей (световая микроскопия).
Условия опыта |
n |
Доля нейтрофилов спризнаками апоптоза в%, ±m |
Доля лимфоцитов спризнаками апоптоза в%, ±m |
||
молодые |
старые |
молодые |
старые |
||
Контроль |
9 |
5,91±0,217 ++ |
7,85±0,297 |
6,38 ± 0,298 + |
7,89 ± 0,312 |
Гипогидратационный стресс |
9 |
8,11± 0,415 ** + |
10,18± 0,611 ** |
9,04 ± 0,381 *** + |
10,67 ± 0,579 ** |
Витамин Е |
9 |
5,23 ± 0,149 ++ |
6,21 ± 0,278 ** |
5,67± 0,321 |
6,33 ± 0,215 ** |
Стресс + Витамин Е |
9 |
6,22 ± 0,453 # + |
7,52 ± 0,349 ## |
7,36± 0,275 * ## |
7,85± 0,191 ** # |
Стресс + витамин Е + витамин С |
9 |
5,97 ± 0,272 ### ++ |
7,35 ± 0,243 ### |
6,89± 0,173 ### + |
7,48± 0,204 ### |
Примечание: (здесь и в остальных таблицах)*-р<0,05, **-р<0,01;***-р<0,001 достоверность различий в сравнении с контрольной группой
#- р<0,05, ##-р<0,01;###-р<0,001 — достоверность различий в сравнении с стрессированными животными
+- р<0,05, ++-р<0,01;+++-р<0,001 — достоверность различий в сравнении с старыми животными
±m — ошибка средней
Таблица 2
Влияние стресса иантиоксидантов на уровень апоптоза нейтрофилов илимфоцитов крыс (световая микроскопия).
Условия опыта |
n |
Доля нейтрофилов спризнаками апоптоза в%, ±m |
Доля лимфоцитов спризнаками апоптоза в%, ±m |
||
молодые |
старые |
молодые |
старые |
||
Контроль |
8 |
6,53± 0,324 +++ |
8,64±0,359 |
6,84 ± 0,322 ++ |
8,83±0,371 |
Иммобилизационный стресс |
7 |
9,04± 0,553 **+ |
11,21±0,602 ** |
9,22 ± 0,489 **++ |
11,64±0,632 ** |
Витамин Е |
8 |
5,69 ± 0,307 |
6,52±0,461 ** |
5,91± 0,356 ++ |
6,77±0,389 ** |
Стресс + Витамин Е |
8 |
7,08 ± 0,409 # + |
8,97±0,538 # |
7,11± 0,315 * ## |
8,05±0,416 ### |
Эмоксипин |
8 |
6,07 ± 0,344 ++ |
7,83±0,508 |
5,92± 0,354 *++ |
7,91±0,437 |
Стресс + эмоксипин |
8 |
7,91±0,482 *+ |
10,04±0,723 |
8,09±0,512 *#+ |
10,13±0,804 |
При исследовании динамики апоптоза нейтрофилов и лимфоцитов с помощью флуоресцентной микроскопии прослеживается аналогичная закономерность в изменении уровня апоптоза элементов белой крови, что и при световой микроскопии. Однако процент апоптозных нейтрофилов и лимфоцитов оказался несколько выше, чем при световой микроскопии, что связано с тем, что при флуоресцентном окрашивании апоптоз можно наблюдать на ранних стадиях.
Таблица 3
Влияние гипогидратационного стресса ивитаминов на уровень апоптоз нейтрофилов илимфоцитов молодых истарых мышей (люминесцентная микроскопия)
Условия опыта |
n |
Доля нейтрофилов спризнаками апоптоза в%, ±m |
Доля лимфоцитов спризнаками апоптоза в%, ±m |
||
молодые |
старые |
молодые |
старые |
||
Контроль |
9 |
9,51±0,502 + |
11,85±0,748 |
9,87±0,616 + |
11,93±0,818 |
Гипогидратационный стресс |
9 |
13,26±0,867 **,+ |
16,31±0,986 ** |
14,05±0,934 **,+ |
16,82±0,903 *** |
Витамин Е |
9 |
9,06±0,539 |
9,46±0,509 * |
8,81±0,546 + |
9,14±0,481 * |
Стресс + Витамин Е |
9 |
10,84±0,692 #,+ |
12,81±0,645 ## |
11,23±0,781 # |
12,33±0,636 ### |
Стресс + витамин Е + витамин С |
9 |
10,29±0,728 #, + |
12,06±0,456 ## |
10,71±0,632 ## |
12,12±0,719 ### |
Таблица 4
Влияние стресса иантиоксидантов на уровень апоптоза нейтрофилов илимфоцитов крыс (люминесцентная микроскопия).
Условия опыта |
n |
Доля нейтрофилов с признаками апоптоза в %, ±m |
Доля лимфоцитов с признаками апоптоза в %, ±m |
||
молодые |
старые |
молодые |
старые |
||
Контроль |
8 |
9,73± 0,611 + |
12,01±0,831 |
10,39±0,796 + |
13,01±0,751 |
Иммобилизационный стресс |
7 |
12,98 ± 0,806 ** ++ |
16,89±0,774 *** |
14,86±0,724 ** + |
17,29±0,853 ** |
Витамин Е |
8 |
8,34±0,437 ++ |
9,45±0,425 * |
8,46±0,413 +++ |
10,61±0,534 * |
Стресс + Витамин Е |
8 |
10,39±0,707 # ++ |
13,56±0,583 ## |
11,78±0,728 # ++ |
14,87±0,628 # |
Эмоксипин |
8 |
9,05±0,552 |
11,32±0,501 |
9,72±0,623 ++ |
12,49±0,616 |
Стресс + эмоксипин |
8 |
10,81±0,644 # ++ |
14,02±0,818 # |
12,14±0,656 # ++ |
15,07±0,584 * # |
Литература:
- Козак М. Ф. Биометрия: учебное пособие. Астрахань: Изд-во Астрах. пед. ин-та им. С. М. Кирова, 1995. — 160 с.
- Суханова Г. А., Акбашева О. Е. Апоптоз: учебное пособие.- Томск: Изд. ТПУ.- 2006.- 172 с.
- Теплый Д. Л. Нейрофизиологические эффекты витамина Е. Астрахань: ЛЕОН.- 2008.- 309с.
4. Asadi E., Jahanshahi M.,. Golalipour M. J. Effect of Vitamin E on Oocytes Apoptosis in Nicotine-Treated Mice //Iran J Basic Med Sci.- 2012.- Vol.15, № 3.-Р. 880–884.
- Conradt B. Genetic control of programmed cell death during animal development // Annu Rev Genet.- 2009.- Vol.43.-Р. 493–523.
6. Effects of oxidative stress on apoptosis in manganese-induced testicular toxicity in cocks/ Liu X. F. [et al] //Food Chem Toxicol.- 2013.- Vol.60.-Р.168–176.
7. Favaloro B., Allocati N., Graziano V. Role of Apoptosis in disease // Aging (Albany NY).- 2012.- № 4(5).-Р.330–349.
- Fulle S., Centurione L., Mancinelli R. Stem cell ageing and apoptosis // Curr Pharm Des.- 2012.-№ 18.- Р.1694–1717.
9. Joshi Y.B, Praticò D. Vitamin E in aging, dementia, and Alzheimer's disease //Biofactors.- 2012.- Vol.38, № 2.-Р.90–97.
- Maalouf S., El-Sabban M., Darwiche N., Gali- Muhtasib H. Protective effect of vitamin E on ultraviolet В light-induced damage in keratinocytes //Mol. Carcinog.- 2002,-Vol. 34, N3.- P.121–130.
- Pettmann B., Henderson С. E. Neuronal cell death // Neuron. 1998. — Apr 20 (4). — P. 633–647.
12. Ryoo H.D, Bergmann A. The role of apoptosis-induced proliferation for regeneration and cancer// Cold Spring Harb Perspect Biol. -2012.- № 4(8).- 787–789.
13. Schleich K., Lavrik I. N. Mathematical modeling of apoptosis //Cell Commun Signal.- 2013.- Vol. 11,№ 1.- Р.44.