Длительность лапароскопической овариогистерэктомии в зависимости от инструментального обеспечения



Лапароскопическая овариогистерэктомия — несложная операция, которая заключается в удалении яичников и матки, вследствие чего животное лишается репродуктивной функции. При хирургическом вмешательстве такого рода на животе животного делается два небольших прокола, которые быстро заживают. На сегодняшний день такой метод стерилизации является самым щадящим и гуманным. [15, 18, 20]

Научно доказано, что стерилизация, проведенная лапороскопическим методом, абсолютно безопасна. Кроме того, эта процедура полезна для здоровья животного, так как профилактирует развитие опухолей молочных желез и воспалительных процессов репродуктивных органов, тем самым способна продлить жизнь животного. [3, 14, 21]

Целью наших исследований явилось изучение длительности лапароскопии в оперативном акушерстве мелких домашних животных в зависимости от инструментального обеспечения.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

Данная работа выполнялась на кафедре анатомии, ветеринарного акушерства и хирургии Кубанского государственного аграрного университета и в частной ветеринарной клинике «Большая медведица» г. Краснодара.

Для проведения настоящих исследований были сформированы 2 группы (контрольная и опытная) животных, подобранных по принципу «пар-аналогов», n=10 в каждой группе. В них входили кошки разных пород (по 2 животных персидской породы, 2 животных русской голубой породы, 1 животному сиамской породы, 5 животных, не имеющих породности) в возрасте от 1-го до 3-х лет, самки, со средним весом 3 кг, отобранные методом случайной выборки. Животные всех групп были подвергнуты лапароскопической овариогистерэктомии. [8, 17, 22]

Операционную готовили, соблюдая правила асептики и антисептики. Было подготовлено два операционных набора: для эндоскопической операции, в том числе инструменты общехирургического назначения, и набор инструментов для открытой операции при необходимости конверсии. [5, 7, 23]

В качестве премедикации всем животным за 20 минут до операции применяли следующие препараты: Атропина сульфат 0,1 % по 0,15 мл подкожно; Пипольфен 0,25 % по 0,1 мл внутримышечно. В качестве седативного препарата применяли Ксилазин 2 % по 0,5 мл внутримышечно. [1, 6, 24]

В рамках опыта животным осуществляли ингаляционный наркоз с применением Изофлурана. Для этого первоначально внутривенно вводилась минимальная доза Золетила с целью подавления рефлексов, затем производили интубацию трахеи. После этого производили подачу Изофлурана в концентрации 1,5–3 % в смеси с кислородом. Непосредственно около операционного стола имелся аппарат искусственной вентиляции легких. [10, 13, 25]

Ход операции. Первоначально произвели прокол брюшной стенки иглой Вереша с целью создания карбоноперитонеума, в чем убеждались по наличию тимпанического звука при перкуссии брюшной полости. При этом в параметрах инсуффлятора устанавливали показатель давления, равный 6–7 мм рт. ст. затем иглу Вереша извлекали и вводили троакары диаметром 5 мм в двух точках: точка, располагающаяся на расстоянии 4–5 см выше пупка и чуть левее от срединной линии живота, и точка на расстоянии 1–2 см ниже пупка. После чего животное поворачивали в боковое положение под углом в 45^о. Из троакаров извлекали стилеты, затем в краниальный троакар вводили лапароскоп и присоединяли шланг для подведения газа, а в каудальный — зажим с кремальерой. Производилась фиксация одного из рогов матки, подведение его к брюшной стенке и подвешивание при помощи специального крючка. После извлекание зажима на его место устанавливали коагулятор, которым пережигали сосуды и связку яичника. После замены коагулятора на ножницы рассекали коагулированные ткани. Аналогичные действия осуществляли в отношении второго яичника. Далее выводили матку через каудальный троакар, производили ее экстирпацию по общепринятой методике. Убедившись в отсутствии остаточного кровотечения культи, опускали ее в брюшную полость и извлекали все инструменты. На мышцы брюшной стенки накладывали внутрикожный шов, а кожу склеивали специальным хирургическим клеем. Средняя продолжительность операции составляла 20–30 минут. [2, 9, 12]

Для животных опытной группу использовали инструмент байвижн, производимый компанией KARL STORZ с целью профилактики внутреннего кровотечения в послеоперационный период. Он представляет собой керамический коагулятор с обратной связью и встроенным ножом. При полном коагулировании тканей происходит автоматическое прекращение подачи электричества и, соответственно, коагуляция. Сразу после этого выдвигается режущая честь инструмента, которая производит рассекание коагулированных тканей. При этом исчезает необходимость отдельного использования эндоскопических ножниц. [4, 11, 26]

При проведении эксперимента использовали следующие методы исследования: клинический, эндоскопический, гематологический. Результаты исследований подвергнуты математической обработке с использованием стандартных программ статистического анализа, а достоверность результатов определялась по параметрическому критерию Стьюдента.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

Проведение лапароскопических операций у животных становится невозможным баз создания избыточного давления в брюшной полости, для этого использовали двуокисью углерода с давлением 7–8 мм ртутного столба. Вследствие такой манипуляции происходят изменения легочной вентиляции и гемодинамики. Также неизбежно частичное всасывание углекислого газа, что влечет за собой нарушения гомеостаза. [4]

С целью профилактирования осложнений после проведенной лапароскопической операции, а также для снижения риска возникновения анестезиологических осложнений для организма животного, необходимо знать особенности гематологических изменений, происходящих при такого рода манипуляциях, при создании карбоноперитонеума. Следует учитывать, что достоверных данных, освещающих этот вопрос, в научной литературе на сегодняшний день не имеется. [8, 11]

В рамках второго опыта в ходе лапароскопической овариогистерэктомии в опытной и контрольной группах были использованы различные инструменты, о чем подробно изложено в материалах и методах исследования.

Динамика компонентов красной крови у кошек до и после проведения лапароскопической овариогистерэктомии.

При проведении общего анализа крови кошек группы контроля выявлено, что содержание эритроцитов непосредственно после оперативного вмешательства снизилось на 0,52*10¹²/л, а у животных опытной группы понижение эритроцитов составило всего лишь 0,26*10¹²/л. Величина этого показателя у кошек опытной группы на 7 сутки после операции практически поднялась до показателей, полученных до операции. У кошек группы контроля увеличение количества эритроцитов было незначительным. При этом все результаты, полученные на различных этапах, соответствовали физиологическим нормам. Изменения количества эритроцитов отражены в таблице 1.

Таблица 1

Динамика изменения количества эритроцитов до и после лапароскопии

Вид группы животных	Количество эритроцитов (*1012/л)
	Норма*	до операции	сразу после операции	через 7 дней после операции
Опытная	5,8–10,5	6,89±2,13	6,63±1,87	6,74±1,98
Контрольная		6,83±2,09	6,31±2,21	6,45±2,02

при этом р <0,05.

*по данным Д. Mейеp, Дж. Хapви. «Ветеринарная лабораторная диагностика», 2007

Для наглядности оценки изменений количества эритроцитов приведен рисунок 1.

Рис. 1. Динамика изменения количества эритроцитов до и после лапароскопии, где цена промежуточных делений оси абсцисс равна 0,1*10¹²/л

Анализируя динамику количества тромбоцитов сразу после операции установили, что у животных опытной группы их количество резко увеличилось относительно исходных данных на 127,3*109/л, а у кошек контрольной группы на 188,3*109/л, что объясняется естественной реакцией организма на проведение хирургического вмешательства.

Количество тромбоцитов у животных опытной и контрольной групп на 7-е сутки исследований было в пределах нормы, однако содержание тромбоцитов у животных опытной группы было ниже на 7,1 % относительно группы контроля. Исходя из этого можно утверждать, что у животных опытной группы восстановление тромбоцитов до нормы идёт значительно быстрее, чем у кошек контрольной группы.

Изменения количества тромбоцитов отражены в таблице и рисунке 2.

Таблица 2

Динамика изменения количества тромбоцитов до и после лапароскопии

Вид группы животных	Количество тромбоцитов (*109/л)
	Норма*	до операции	сразу после операции	через 7 дней после операции
Опытная	300–800	563,7±151,35	691±166,97	609,4±154,77
Контрольная		555,6±147,09	743,9±256,89	656±169,63

при этом р <0,05.

*по данным Д. Mейеp, Дж. Хapви. «Ветеринарная лабораторная диагностика», 2007

Рис. 2. Динамика изменения количества тромбоцитов до и после лапароскопии, где цена промежуточных делений оси абсцисс равна 50*109/л

Оценивая изменение количество гемоглобина кошек опытной и контрольной групп непосредственно сразу после операции наблюдали его незначительный спад по сравнению с исходными данными. Содержание гемоглобина в периферической крови кошек обеих групп к 7-м суткам оставалось практически неизменным. При этом все результаты измерений, которые были получены на различных этапах исследования, соответствовали физиологическим нормам.

Изменения количества гемоглобина отражены в таблице 3.

Таблица 3

Динамика изменения количества гемоглобина до и после лапароскопии

Вид группы животных	Количество гемоглобина (г/л)
	Норма*	до операции	сразу после операции	через 7 дней после операции
Опытная	90–150	137,8±53,27	134,3±53,55	136,2±54,53
Контрольная		139,3±49,38	137±51,09	138,4±52,75

при этом р <0,05.

*по данным Д. Mейеp, Дж. Хapви. «Ветеринарная лабораторная дигностика», 2007

Для наглядности оценки изменений количества гемоглобина приведен рисунок 3.

Рис. 3. Динамика изменения количества гемоглобина до и после лапароскопии, где цена промежуточных делений оси абсцисс равна 1 г/л

Динамика лейкограммы крови кошек до и после проведения лапароскопической овариогистерэктомии.

При исследовании крови кошек обеих групп на определение количества лейкоцитов также как и при оценке лейкограмм до операции нами было отмечено, что показатели находились в пределах физиологических норм. При повторном определении после проведения хирургического вмешательства у животных обеих групп было отмечено изменение общего количества лейкоцитов в крови, содержание которых повысилось в опытной и контрольной группах на 0,51*109/л и 0,61*10⁹/л соответственно.

К 7-м суткам данный показатель в обеих группах практически достиг тех цифр, которые были получены до операции. При этом содержание лейкоцитов на всех этапах исследований находился в пределах физиологических параметров.

Из полученных данных видно, что изменения показателей незначительны, и их динамика схожа в группах опыта и контроля. Это можно объяснить тем, что лапароскопия относится к малоинвазивным вмешательствам.

Изменения общего количества лейкоцитов отражены в таблице 4.

Таблица 4

Динамика изменения общего количества лейкоцитов до и после лапароскопии

Вид группы животных	Количество лейкоцитов (*109/л)
	Норма*	до операции	сразу после операции	через 7 дней после операции
Опытная	5,5–19,5	8±4,05	8,51±3,73	8,19±3,61
Контрольная		7,53±4,42	8,14±4,02	7,54±4,03

при этом р <0,05.

*по данным Д. Mейеp, Дж. Хapви. «Ветеринарная лабораторная дигностика», 2007

Для наглядности оценки изменений общего количества лейкоцитов приведен рисунок 4.

Рис. 4. Динамика изменения общего количества лейкоцитов до и после лапароскопии, где цена промежуточных делений оси абсцисс равна 0,2*109/л

В ходе исследований было отмечено, что изменения процентного отношения клеток белой крови являлись незначительными, все показатели находились в пределах физиологической нормы.

Содержание эозинофилов незначительно увеличено: на 0,8 % у кошек опытной группы и на 1,3 у животных контрольной группы. Это обусловлено развитием аллергической реакции замедленного типа. К 7 суткам опыта происходило снижение эозинофилов, этот показатель достиг тех цифр, которые были получены до проведения оперативного вмешательства.

Количество палочкоядерных нейтрофилов осталось практически неизменным, в то время как количество сегментоядерных нейтрофилов сразу после хирургического вмешательства у кошек опытной группы незначительно повысилось на 2,3 %, а у кошек контрольной группы — на 2,8 %. До конца наблюдения у животных исследуемых групп выявлены изменения исследуемой величины в пределах физиологических параметров.

Динамика Т- и В- лимфоцитов у кошек до и после проведения лапароскопической овариогистерэктомии.

При анализе относительного содержания Т- лимфоцитов сразу после операции у животных опытной группы отмечено его увеличение на 16,3 % и на 18,5 % у животных контрольной группы. Увеличение же абсолютных данных составило 0,4  10⁹ /л и данных составило 0,65  10⁹ /л соответственно. В это же время содержание В- лимфоцитов у собак опытной группы увеличилось на 18,3 %, а у животных контрольной группы — на 23,8 %. Абсолютное их содержание так же увеличилось и составило — 0,35  10⁹ /л и данных составило 0,8  10⁹ /л соответственно.

На 7-е сутки у собак опытной группы отметили уменьшение относительной величины Т — лимфоцитов на 6,5 % — до нормы, в то время как у животных контрольной группы эта величина снизилась на 3,8 %. Сравнивая показатели В — лимфоцитов нами установлено, что в группе опытных животных этот показатель снизился на 6,5 %, а в контрольной на 4,2 %.

При анализе данных на 28-е сутки у собак опытной группы уровень Т — лимфоцитов оказался незначительно выше исходной величины. Количество В — лимфоцитов у этих животных находилось в пределах физиологических параметров нормы. У животных контрольной группы показатели Т — лимфоцитов были достоверно ниже на 0,52  10 /л по сравнению с данными опытной группы. Абсолютная величина В — лимфоцитов у кошек контрольной группы достоверно ниже показателей опытной группы, разница составила 0,65  10 /л.

Динамика биохимических показателей сыворотки крови кошек до и после проведения лапароскопической овариогистерэктомии.

Содержание в сыворотке крови общего белка и белковых фракций, у животных опытной и контрольной групп до оперативного вмешательства было в пределах нормы.

У животных опытной группы отмечено некоторое повышение содержания белка к 7-м суткам после операции относительно исходных данных в обоих группах, что указывает на незначительный воспалительный процесс, при этом показатели находилось в пределах физиологических параметров нормы.

Концентрация альбуминов в периферической крови животных опытной группы сразу после проведения овариогистерэктомии уменьшилась на 1,43 г/л, а в контрольной группе — на 1,67 г/л относительно значений до операции. Уже на 7 сутки у животных опытной и контрольной групп произошло восстановление исследуемого показателя до физиологических параметров нормы.

Прослеживая изменения альфаглобулинов в сыворотке крови животных, мы отметили, что после операции они увеличились в опытной и контрольной группах на 4,24 г/л и 3,88 г/л соответственно. По истечению 7-ми суток после операции было выявлено, что у кошек обеих групп произошло восстановление концентрации альфаглобулинов до физиологических параметров.

Содержание бетаглобулинов в сыворотке крови животных после операции превысило исходные значения в опытной группе на 3,65 г/л, а в контрольной группе на 3,34 г/л. На 7-е сутки данная величина достигла физиологической нормы.

После оперативного вмешательства нами было отмечено увеличение количества гаммаглобулинов в опытной и контрольной группах на 2,79 г/л и 1,27 г/л, соответственно. Уже на 7-е сутки данная величина восстановилась и достигла физиологических параметров нормы.

Динамика концентрации СО₂ в крови кошек до и после проведения лапароскопической овариогистерэктомии.

При анализе содержания количества углекислого газа в крови животных опытной группы сразу после оперативного вмешательства отметили повышение исследуемой величины на 1,68 ммоль/л, в то время как у животных контрольной группы данное повышение составило 2,09 ммоль/л, что является превышением нормы. К 7 суткам величина данного показателя практически достигла исходных данных и соответствовала физиологическим нормам. Изменения количества гемоглобина отражены в таблице 5.

Таблица 5

Динамика изменения количества углекислого газа до и после лапароскопии

Вид группы животных	Количество углекислого газа (ммоль/л)
	Норма*	до операции	сразу после операции	через 7 дней после операции
Опытная	28–32	30,29±1,4	31,97±2,05	30,26±1,44
Контрольная		30,26±1,63	32,35±1,56	31,24±1,61

при этом р <0,05.

*по данным Д. Mейеp, Дж. Хapви. «Ветеринарная лабораторная дигностика», 2007

Для наглядности оценки изменений количества углекислого газа приведен рисунок 5.

Рис. 5. Динамика изменения количества углекислого газа до и после лапароскопии, где цена промежуточных делений оси абсцисс равна 0,5 ммоль/л

В ходе опыта нами был проведен анализ динамики парциального давления углекислого газа в крови кошек обеих групп. Было установлено, что сразу после операции у животных опытной группы данный показатель увеличился относительно исходных данных на 14,7 %, а у кошек контрольной группы на 18,7 %. По истечении недели исследуемый показатель достиг пределов физиологической нормы и составил 49,4 мм. рт. ст. и 52,21 мм. рт. ст. в опытной и контрольной группах соответственно.

Изменения значений парциального давления углекислого газа в крови кошек отражены в таблице 6.

Таблица 6

Динамика изменений значений парциального давления углекислого газа в крови кошек до и после лапароскопии

Вид группы животных	Значение парциального давления углекислого газа (мм. рт. ст.)
	Норма*	до операции	сразу после операции	через 7 дней после операции
Опытная	40–55	48,2±8	55,29±5,44	49,24±3,01
Контрольная		48,33±6,29	57,37±4,21	52,21±2,79

при этом р <0,05.

*по данным Д. Mейеp, Дж. Хapви. «Ветеринарная лабораторная дигностика», 2007

Для наглядности оценки изменений значений парциального давления углекислого газа в крови кошек приведен рисунок 6.

Рис. 6. Динамика изменений значений парциального давления углекислого газа в крови кошек до и после лапароскопии, где цена промежуточных делений оси абсцисс равна 2 мм. рт. ст.

В заключении необходимо сказать, что при проведении опыта ни в одной группе не наблюдалось осложнений в виде внутреннего кровотечения.

ВЫВОДЫ:

1. Использование инструмента байвижн позволяет сократить длительность оперативного вмешательства в среднем с 20 мин до 13 мин, однако его использование в настоящее время является неоправданным с экономической точки зрения. Вследствие того, что организм животного меньшее время находится в состоянии наркоза, гематологические показатели опытной группы были предпочтительнее, чем у контрольной.
2. Оценивая показатели красной крови отмечено, что снижение эритроцитов в крови кошек группы контроля составило 0,52*10¹²/л, а у животных опытной группы понижение эритроцитов — всего лишь 0,26*10¹²/л. Величина этого показателя у кошек опытной группы на 7-е сутки после операции практически поднялась до показателей, полученных до операции. У кошек группы контроля увеличение количества эритроцитов было незначительным. Анализируя динамику количества тромбоцитов сразу после операции установили, что у животных опытной группы их количество резко увеличилось относительно исходных данных на 127,3*109/л, а у кошек контрольной группы на 188,3*109/л. Количество тромбоцитов у животных опытной и контрольной групп на 7 сутки исследований было в пределах нормы, однако содержание тромбоцитов у животных опытной группы было ниже на 7,1 % относительно группы контроля. Исходя из этого можно утверждать, что у животных опытной группы восстановление тромбоцитов до нормы идёт значительно быстрее, чем у кошек контрольной группы.
3. Парциальное давление углекислого газа в крови животных опытной группы увеличилось относительно исходных данных на 14,7 %, а у кошек контрольной группы на 18,7 %. По истечении недели исследуемый показатель достиг пределов физиологической нормы и составил 49,4 мм. рт. ст. и 52,21 мм. рт. ст. в опытной и контрольной группах соответственно.

Литература:

1. Жуленко В. Н. Фармакология: учебники и учеб. пособия для студентов высш. учеб. заведений [Текст] / В. Н. Жуленко, Г. И. Горшков; под ред. В. Н. Жуленко. — М.: КолосС, 2008. — 512 с.
2. Итин Г. С. Эколого-фаунистическая характеристика гельминтов лисицы обыкновенной на территории Краснодарского края / Г. С. Итин, В. М. Кравченко // Ветеринария Кубани. – Краснодар, – 2010. – № 3. – С. 17–19.
3. Клиническая хирургия в ветеринарной медицине [Текст]: учебное пособие для студентов высших учебных заведений по специальности «Ветеринарная медицина» / Э. И. Веремей, А. А. Стекольников, Б. С. Семенов и др.; под ред. Э. И. Веремея, А. А. Стекольникова. ‒ Минск: ИВЦ Минфина, 2010. ‒ 600 с.
4. Кравченко Г. А. Гельминтофауна волка северо-западного Кавказа // Научное обеспечение агропромышленного комплекса. — Краснодар: КубГАУ. 2016. — С. 122–123.
5. Кравченко В. М. Зараженность домашних и диких плотоядных Dirofilaria immitis и Dirofilaria repens в различных эколого-географических зонах Краснодарского края / В. М. Кравченко, Г. С. Итин, Д. П. Винокурова // Труды КубГАУ. – № 1. – Краснодар: КубГАУ. 2009. – С. 164-165.
6. Кравченко В. М. Патоморфологические изменения у собак и шакалов, вызываемые ассоциацией DIRОFILARIA IMMITIS и DIROFILARIA REPENS / В. М. Кравченко, Г. С. Итин, Д. П. Винокурова // Труды Кубанского государственного аграрного университета. – 2011. – № 32. – С. 166–168.
7. Лапшин А. Н. Лапароскопия в практике ветеринарного врача: ч. 1. Базовая лапароскопия [Текст] / А. Н. Лапшин // VetPharma. ‒ 2013. ‒ № 2. — С. 76–79.
8. Назаров М. В. Разработка и усовершенствование методов коррекции воспроизводительной функции у коров при патологическом течении родов и послеродового периода: Автореф. дисс. д-ра ветеринар. Наук / М. В. Назаров // Ставрополь, 1997. – 50 с.
9. Околелова А. И. Фармакология и применение препарата клемацид при лечении кожно-мышечных инфицированных ран у лошадей: автореф. дисс. канд. вет. наук:-Краснодар, 2011. – 24с.
10. Особенности этиопатогенеза, диагностики и лечения субинволюции половых органов у коров / М. В. Назаров, Б. В. Гаврилов, В. В. Сиренко, Е. А. Аганин, И. В. Коваль // Труды Кубанского государственного аграрного университета. – 2014. – Т. 1. № 46. – С. 193–194.
11. Патент 2190324 Российская Федерация, МПК С2 А 01 J 7/00 Способ стимуляции молочной железы первотелок при машинном доении и устройство для его осуществления / Н. И. Богатырев, М. В. Назаров, Л. А. Дайбова и др.; заявитель и патентообладатель КГАУ. – № 2000110973/13 заявл. 28.04.2000; опубл. 10.10.2002. Бюл. № 28. – 12 с.
12. Патент 2299559 Российская Федерация, МПК С2 А01J 7/00 (2006.01) А01J 7/04 (2006.01) Устройство для массажа вымени животных / Н. Н. Курзин, И. А. Потапенко, А. Л. Кулакова и др.; заявитель и патентообладатель КГАУ. – № 2004134316/12 заявл. 24.11.2004; опубл. 27.05.2007. Бюл. № 15. – 4 с.
13. Пат. 2156115, Российская Федерация, МПК7 61 D 1/08. Способ электростимуляции мышц матки при патологии в послеродовой период (субинволюции половых органов, атонии и гипотонии матки, эндометритах) у животных и устройство для его осуществления / Н. И. Богатырев, М. В. Назаров, Н. А. Демьянченко. Опубл. 03.06.1999.
14. Позябин С. В. Динамика изменения кислотно-основного и газового состава крови при проведении лапароскопических операций у собак [Текст] / С. В. Позябин, Н. И. Шумаков // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. ‒ 2014. ‒ № 7. ‒ С. 28–32.
15. Позябин С. В. Лапароскопическая хирургия у мелких домашних животных: безопасность и эффективность применения: Опыты на клинически больных домашних собаках [Текст] / С. В. Позябин, Н. И. Шумаков // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. ‒ 2014. ‒ № 11. ‒ С. 23–26.
16. Полатайко О. Ветеринарная анестезия: практическое пособие [Текст] / О. Полатайко. — К.: Перископ, 2009. — 408 с.
17. Ромбандирова Н. А. Проблемы фальсификации мяса и мясных продуктов//Наука и образование в XXI веке. — Люберцы: АР-Консалт, 2015. — С. 54–55.
18. Тимофеев С. В. Общая хирургия животных [Текст] / С. В. Тимофеев, Ю. И. Филипов, С. Ю. Концевая. — М.: Зоомедлит, 2007. — 687 с.
19. Уиллард М. Лабораторная диагностика в клинике мелких домашних животных: учебное пособие [Текст] / М. Уиллард, Г. Тведтен, Г. Торнвальд; под ред. Макарова В. В.; пер. с англ. Евелевой Л. И., Пимочкиной Г. Н., Свиридовой Е. В. — изд. 3-е. — М.: Аквариум Бук, 2004. — 430 с.
20. Чернов А. В. 700 лапароскопий в ветеринарной практике. Уроки и перспективы: Собаки, кошки, кролики, хорьки; данные за 2006–2011 гг. [Текст] / А. В. Чернов // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. ‒ 2012. ‒ № 4. ‒ С. 29–36.
21. Хаперский М. В. Ингаляционный наркоз для животных [Электронный ресурс] / М. В. Хаперский, А. А. Перов. — Электрон. текстовые дан. — СПб.: [б. и.], 2013. — Режим доступа: http://vetclinic-if.ru/learnmore/poleznayainformacia/poleznyestatii/ingalyacionnyinarkoz/, свободный.
22. Шумаков Н. И. Гематологический мониторинг у собак при проведении лапароскопии в ветеринарной клинике [Текст] / Н. И. Шумаков, С. В. Позябин, П. П. Ершов // Ветеринарная патология. — 2014. — № 1 (47). — С. 87–92.
23. Barinskii I. F., Ulasov V. I., Kravchenko V,M., Toloknov A. S., Lycheva I. A., Alimbarova L. M. Combined use of killed vaccines and immunomodulator Ridostin for urgent prevention of epidemic stomatitis, aujeszky disease and carnivore plague in experiment. Problems of virology 2002; 47: 30–2.
24. Laparoscopic ovariectomy in dogs: comparison between single portal and two-portal access [Text] / G. Dupre, V. Fiorbianco, M. Skalicky, N. Gultiken, S. S. Ay, M. Findik // Vet/ Surg., 2009. — № 38(7). — 824.
25. Hall T. J. Manual of Canine and Feline Endoscopy and Endosurgery [Text] / T. J. Hall. — BSAVA, 2008.
26. Mange M. L. Laparoscopy: Instrumentation and Technique [Text] / M. L. Mange // Small Animal Endoscopy. — St, Louis, The S.V/ Mosby Company, 2008. — 426.