Отправьте статью сегодня! Журнал выйдет 12 июля, печатный экземпляр отправим 16 июля
Опубликовать статью

Молодой учёный

Нитрифицирующие бактерии поверхностных вод озер Курганской области

Биология
13.05.2022
123
Поделиться
Библиографическое описание
Исупова, Я. В. Нитрифицирующие бактерии поверхностных вод озер Курганской области / Я. В. Исупова. — Текст : непосредственный // Молодой ученый. — 2022. — № 19 (414). — С. 35-39. — URL: https://moluch.ru/archive/414/91286/.


В статье были выделены основные аспекты пресноводных и слабосоленых озерных нитрофицирующих бактерий в Курганской области.

Ключевые слова: нитрифицирующие бактерии, пресноводные озера, соленые озера, грамположительные, грамотрицательные.

Актуальность : нитрифицирующие микроорганизмы, обитающие в водоемах, осуществляют часть замкнутого цикла основного биогенного элемента — азота, который задействован в потоке энергии в водной среде.

Водные экосистемы являются динамичным подразделениям, поэтому и озера участвуют в динамичных биосферных процессах (сукцессионных, флуктуациях, межсезонных) [1, с.7].

Изучение роли нитрифицирующих микроорганизмов и самого азотного обмена здесь — это важный показатель, влияющий на развитие планктона, как кормовой базы для целевых гидробионтов: рыбы, ракообразные и т. п.

Так как в Курганской области насчитывается более трех тысяч озер, следовательно, изучение роли нитрифицирующих бактерий, в том или ином водоеме, представляет собой важный момент гидробиологических исследований.

Объектом для исследования послужили сборы воды на территории Курганской области со следующих озер: Половинное, Становое, Беломойное, Снегирево, Голубые озера, Соленое, Елошное и Суерское.

Озера замкнутого типа – это озера, где глинисто-заиленое дно преобладает над песчаным. К пресноводным относятся озера от 0,01 % минерализации до 0,3 %. К слабосоленым относятся водоемы от 0,3 % до 1 % минерализации [3, с. 7]. Уровень солености определяли TDS-метром. Характеристика водоемов представлена в таблице 1.

Таблица1

Название водоема

Дата взятия проб

Зарастание

Грунт водоема

Прозрачность (см)

Температура воды (С°)

Половинное

12.08.2021

Наводное- Phragmites australis . Подводное-– Ceratophyllum demersum .

Глинисто-заиленый

50

19,6

Становое

12.08.2021

Подводное-)- Phragmites australis, рогоз Typha Latifolia . Зарастание подводное– Lamna minor, Lamna trisulca, телорез+ водокрас.

Илиситое

40

19,2

Соленое

12.08. 2021

Подводное- Myriophyllum spicatum .

Глинисто-заиленый

10

18,3

Беломойное

12.08. 2021

Надводное- Phragmites australis .

Глинисто-заиленый

20

18,1

Суерское

24.02.2022

Надводное-рогоз

Илистое

20

3,2

Елошное

24.02.2022

Подводное придонное — Myriophyllum spicatum .

Илистое

40

2,8

Снегирево

24.02.2022

Подводное- Myriophyllum spicatum .

Глинисто-заиленый

30

3,1

Голубые озера

24.02.2022

Подводное- Potamogeton pectinatus,Myriophyllum spicatum .

Песчаное

50

3,6

Материалы и методы

На базе лаборатории КГУ мы выделяли микроорганизмы из стоячих водоемов стационарным методом их культивирования (посев). С помощью электронного одноканального дозатора были взяты пробы воды поверхностного слоя, каждая в объеме 1мл.

С использованием элективных твердых питательных сред нитрифицирующие бактерии количественно учитывали на ГПС и питательном агаре с добавлением сульфат аммония. В качестве индикаторов использовались лакмусовые бумажки, так как их почернение указывает на процесс выделения аммиака. На появившиеся через 5–10 дней колонии наносят по капле реактива Грисса, с покраснением среды регистрировали образование нитритов из аммония [5, с. 7].

Проводился непосредственный подсчет колоний на выделенном участке в 1см 2 . Микроскопировали с помощью микроскопа ЛОМО МИКМЕД-6, фото с помощью камеры MC-10(USB-3.0). К морфологическим признакам относили: форму бактерий, размеры колоний, окраску по Грамму. После окрашивания грамположительные бактерии проявляются в фиолетовом или синем цвете, а грамотрицательные — в красном [5, с. 7].

Результаты и их обсуждение

Визуально колонии проб микрофлоры озер Половинное, Становое, Беломойное и Соленое, между собой были сходны во всех чашках Петри, размер округлых колоний варьировался от 3 до 8 мм. После подсчета колоний выяснили следующее: пробы, находившиеся при комнатной температуре, имели большее количество колоний, но меньших в размере. При микроскопировании были отмечены бактерии различной морфологии: палочковидные, шарообразные и др [2, с. 7]. Окрашивание по Грамму на глюкозо-пептонной среде выявило преобладание грамположительных диплококков, с вкраплениями грамположительных палочек. Количество колоний выросших на ГПС, представлено на рисунке 1.

Chart, pie chart

Description automatically generated

Рис. 1

В повторном посеве микрофлоры на питательном агаре, с добавлением сульфат редуцирующёего агента, культивировались мелко-зернистые колонии до 1мм. Они находились в тесном контакте друг с другом. Наблюдали общее преобладание грамположительных кокков, которые были размещены скоплениями разного размера и количества. Индикатор Грисса в микрофлоре воды озер Соленое и Беломойное, прореагировал красным окрашиванием, что связано с присутствием образовавшихся нитритов из аммония. Количество колоний, выросших на питательном агаре с добавлением сульфат аммония, на рисунке 2.

Chart, pie chart

Description automatically generated

Рис. 2

Микрофлора водоемов Суерское, Снегирево, Елошное и Голубых озер была высеяна на питательный агар с добавлением сульфата аммония. При микроскопировании было замечено преобладание грамположительных сферических прокариотов, с вкраплениями грамотрицательных бактерий и присутствием спор высших грибов. Отмечали отсутствие палочковидных форм. Индикатор Грисса прореагировал в каждом посеве с микрофлорой воды, что указывало на наличие нитритов и интересующих нас бактерий, как представлено в таблице 2.

Таблица 2

Название бассейна

Степень минерализации %

Количество колоний

Реакция на индикатор Гриса

Питательный агар + сульфат аммония (на 1см 2 )

Глюкозо-пептонная среда

Половинное

0,11

107

79

-

Становое

0,23

321

2

-

Соленое

0,61

413

8

+

Беломойное

0,1

97

43

+

Суерское

0,97

509

-

+

Елошное

0,33

711

-

+

Снегирево

0,27

23

-

+

Голубые озера

0,01

88

-

+

Данные по выросшим прокариотам сведены в таблице 3.

Таблица 3

Название водоема

Морфология микроорганизмов

t инкуб

Размер колоний (мм)

Результат окраски по Грамму

Половинное

Единичные палочковидные

22\35

3

Грамотрицательные с примесью грамположительных

Становое

Овальные диплококки

35

8

Грамположительные

Соленое

Диплококки, вытянуты и закруглены

22

4

Преобладание грамположительных

Беломойное

Палочковидные, кокки

35

4

Грамположительные

Суерское

Мелкие скопления кокков, вытянутые прокариоты

25

0–1

Грамположительные, окрасились стенки гифов грибов.

Елошное

Скопления в линии диплококков

18

0–1

Грамположительные

Снегирево

диплококки

18

0–1

Грамотрицательные преобладают

Голубые озера

Редкие кокки

18

0–1

Грамположительные

Количество колоний, выросших на питательном агаре с сульфат аммония, показаны на рисунке 3.

Chart

Description automatically generated

Рис. 3

Количество колоний на 1см 2 , сведения со всех проб микрофлоры воды отображены на рисунке 4.

Chart

Description automatically generated

Рис. 4

Средний размер колоний во всех пробах микрофлоры на рисунке 5.

.

Рис. 5.

Выводы

В посевах на ГПС и питательном агаре, с добавлением в качестве питательных веществ сульфата аммония, были выявлены грамположительные и грамотрицательные бактерии с разной морфологией. Возможно, выделенные бактерии принадлежат к семейству Pseudomonadaceae , так как представители этого семейства неприхотливы в средах и окисляют азот [4, с.7].

В посевах микрофлоры поверхностных вод озер Курганской области преобладали грамположительные бактерии, следующей морфологии: сферические формы, диплококки ( Azotobacter ). Некоторое количество грамотрицательных палочковидных форм .

При прорабатывании методов получения нитрифицирующих микроорганизмов в пробах исследуемой воды были отличия в количестве и размерах колоний, которые проявлялись достаточно ярко.

Литература:

  1. Аникеев В. В., Лукомская К. А.. Руководство к практическим занятиям по микробиологии. М.: Просвещение, 1983 С. — 127.
  2. Кузнецов С. И., Дубинина Г. А. Методы изучения водных микроорганизмов /М.: Наука 1989.-288с.
  3. Методы микроэкологического исследования наземных, водных и воздушных экосистем: Учебное пособие для студентов высших учебных заведений, обучающихся по направлению «Биология» / С. В. Прудникова [и др.]. — Красноярск: СФУ, 2007–152 с.
  4. Микробиология и вирусология: учебно-методическое пособие / сост. Н. В. Шеховцова; Яросл. гос. ун-т им. П. Г. Демидова. — Ярославль: ЯрГУ, 2017–64 с.
  5. Приготовление питательных сред и культивирование микроорганизмов: Методическое пособие/ сост. А. П. Асташкина; Томск. гос. ун-т. — Томск: ТПУ, 2015.-19с.
Можно быстро и просто опубликовать свою научную статью в журнале «Молодой Ученый». Сразу предоставляем препринт и справку о публикации.
Опубликовать статью
Ключевые слова
нитрифицирующие бактерии
пресноводные озера
соленые озера
грамположительные
грамотрицательные
Молодой учёный №19 (414) май 2022 г.
Скачать часть журнала с этой статьей(стр. 35-39):
Часть 1 (стр. 1-65)
Расположение в файле:
стр. 1стр. 35-39стр. 65

Молодой учёный