Опыт обогащения науплиусов артемии

В статье дается анализ фондовых материалов, мирового опыта обогащения живых кормов.

Ключевые слова: подращивание, личинки, науплиусы артемии, обогащенные корма, жирные кислоты, витамины, пробиотики.

В раннем постэмбриогенезе личинкам многих видов рыб при переходе на экзогенное питание необходимо вводить легкоусвояемые высокобелковые компоненты [1]. В качестве стартового живого кома используют науплиусы артемии, к достоинствам которых наряду с физиологической полноценностью можно отнести их размеры и легкость захвата личинками. Кроме того, сухие цисты артемии можно хранить в течение длительного времени [2]. Однако, несмотря на все преимущества артемии, она не является кормом, который обеспечивает личинкам рыб оптимальное для развития количество питательных веществ [2]. Особенно недостаточное в артемии содержание высоконенасыщенных жирных кислот (ВНЖК, HUFA) - эйкозапентаеновой (EPA) и докозагексаеновой (DHA), которые необходимы в процессе роста личинок, но в то же время не могут быть синтезированы [2].

Бельгийскими учеными разработан метод повышения питательной ценности метанауплиусов артемии с помощью обогащения (биоинкапсуляции) рачков ВНЖК [2]. Этот метод заключается в вылуплении артемии, отделении науплиусов, их отмывке от продуктов метаболизма и дальнейшем содержании в течение 24 часов в обогащенной среде. На второй метанауплиальной стадии артемия способна потреблять частицы, которые собираются в результате неселективной фильтрующе-питательной деятельности ее вторых антенн [2].

Для достижения этой цели используют морские водоросли, составные и микрокапсулированные корма и эмульсии. За рубежом (фирма INVEAquacultureNV; Бельгия) более 25 лет для биоинкапсуляции рачков применяют препарат Selco и его разновидности (Selco-Experimental, SuperSelco, SuperSelco-DHA и др.), представляющие собой комплексы экстрагированных жиров морепродуктов и витаминов [3]. Исследования по повышению пищевой ценности различных рас артемии прямым и косвенным методами показали, что науплиусы артемии очень легко ассимилируют ВНЖК 3, жирорастворимые
витамины и витаминные комплексы [4](рисунок 1) [3].

Рис. 1 – Содержание ВНЖК у обогащенных метанауплиусов артемии при использовании препаратов Selco, SuperSelco, SuperSelco-DHA [3]

После обогащения эмульсией Selсo науплиусы содержат в себе высокий уровень незаменимых полиненасыщенных жирных кислот - докозагексаеновой (22:6ω3) и эйкозапентаеновой (20:5ω3) [4].

Следует отметить, что через обогащение артемии личинки рыб могут быть «напитаны» как витаминами, так и пробиотиками, аминокислотами, гормональными препаратами, профилактическими, терапевтическими и другими средствами [1].

В настоящее время разработаны различные диеты для биоинкапсуляции артемии как стартового живого корма личинок морских видов рыб и ракообразных. Отработаны биотехнологические приемы, включая временные интервалы до и после обогащения, количество питательной эмульсии и температура для обогащения рачков [5, 6, 7].

Таким образом, для того чтобы обеспечить высокий темп роста и выживаемость личинок, обогащенная артемия должна содержать как 22:6ω3, так и 20:5ω3. Наибольший результат в темпах роста личинок морских видов рыб показывают диеты, имеющие соотношение DНА:ЕРА как 2:1 в течение первых двух недель кормления [2].

Известны экспериментальные работы по кормлению мальков африканского сомика-кошки (Clariasgariepinus), желтого судака (Stizostedionvitreum), полосатого окуня (Moronesaxatilis) и некоторых других видов рыб артемией (A. franciscana), обогащенной ВНЖК и витамином С [3].

Для ракообразных Mysidopsisbahia, Penaeusstylirostris и Penaeusmonodon питательная ценность обогащенных науплиусов в 1,5 раз выше, чем только что вылупившихся. При этом отмечается улучшение физиологического состояния личинок, увеличение их выживаемости и роста [3, 6, 8]. В то же время, следует отметить, что положительный эффект от кормления обогащенной артемией наблюдается лишь через 15-20 суток после введения в рацион биоинкапсулированных живых кормов [3].

Наблюдения иранских специалистов показали снижение смертности личинок персидского (Acipenser persicus) и сибирского (Acipenser baerii) осетра на 5–12 % после кормления науплиусами артемии (A. urmiana), обогащенными эмульсией из DHA, EPA и витамина С (20 %) [9], а также ВНЖК с поли-β-гидроксибутиратом [10], соответственно, в сравнении с кормлением необогащенной артемией.

При кормлении личинок сибирской стерляди (Acipenser ruthenus marsiglii Brandt)науплиусами, обогащенными препаратом Selco-DHA (с высоким содержанием докозагексаеновой кислоты), их скорость роста по массе на 20-е сутки была в 3,9 раза выше, чем при использовании стартового искусственного корма и в 1,6 раз больше, чем при кормлении необогащенной артемией [1].

С помощью метода биоинкапсуляции науплиусов артемии (A. franciscana) удалось повысить скорость весового роста личинок русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Brandt) в 2,9 раза по сравнению с использованным ранее методом кормления (в течение трех суток - науплиусы артемии, далее - перевод на стартовый искусственный корм Aller Aqua) и сократить смертность молоди в 1,3 раза (выживаемость у 18-суточных личинок достигала 97,6 %), что крайне важно в условиях промышленного подращивания осетровых [11].

В последние годы за рубежом в экспериментальных и коммерческих целях используют новые препараты для обогащения артемии (A. franciscana): MenhadenOil, ALGAMAC-2000, DOCOSAGOLD, MicroFeastL-10, Sander’sRich (Utah, USA) [11]; AlDHASelco (ArtemiaInternationalLLC, USA) [13];PROLON, P. SPARCLE, EASYDHASelco (INVEAquacultureNV, Belgium) [14, 15]. В эмульсии AlDHASelco и EASYDHASelco добавлены витамины А, Д3, С и Е, а также антиоксиданты [16].

Недавние исследования индийских ученых показали возможность использования для обогащения науплиусов вместо коммерческих препаратов некоторых видов микроводорослей: комплексы Nannochloropsissalina, Chlorellasalina и Spirulinasubsalsa или Chaetoceroscalcitrans, Skeletonemacoastatum, DunaliellasalinaиD. Bardawil [16], богатые высоким содержанием ЕРА, протеинов и витаминов. Науплиусы артемии (Artemiasp.), обогащенные в течение 15-ти суток Dunaliellasalina, имели повышенное содержание протеинов, углеводов и жирорастворимых витаминов – бета-каротинов, при внесении в течение 22 дней микроводоросли Chaetoceroscalcitrans– липидов [17].

Помимо микроводорослей, в качестве альтернативы наиболее часто используемого препарата Selco для обогащения рачков применяют рыбий жир (печень трески), а также масло Бурачника, основу которого составляет гамма-линоленовая кислота [17].

При кормлении личинок стерляди иртышской популяции (Acipenser ruthenus marsiglii Brandt) обогащенными науплиусами из водоемов Западной Сибири (A. parthenogenetica), калорийность сухого вещества 11-ти суточных личинок в 1,2 раза превышала калорийность личинок, питавшихся необогащенными рачками. Максимальные среднесуточные приросты у личинок сибирского осетра (до 38 %) отмечены при суточной норме кормления обогащенными кормами, равной 100 % от массы тела личинок осетра [1].

Литература:

1. Чепуркина М.А., Гилева Е.А. Прусиньска М., Кольман Р. Использование метода обогащения науплиусов артемии в осетроводстве. Вестник рыбохозяйственной науки. 2014.Т.1.№4(4).С.78-90.
2. Литвиненко Л.И., Мамонтов Ю.П., Иванова О.В., Литвиненко А.И., Чебанов М.С. Инструкция по использованию артемии в аквакультуре. Тюмень. 2000. 58 с.
3. Merchie G. Use of nauplii and meta-nauplii. Manual on the production and use of live foot for aquaculture. Edited by Lavens P., Sorgeloos P. Ghent, Belgium. University of Ghent. 1996. Р.137-158.
4. Гершанович А.Д., Пегасов В.А., Шатуновский М.И., Экология и физиологиямолоди осетровых//М. ВО Агропромиздат. 1987. 52 с.
5. Sorgeloos Р., Lavens P., Leger Ph., Tackaert W., Versichele D. Manual for the culture and use of brine shrimp in aquaculture. Belgium: Ghent universiteit, 1986. 319 p.
6. Merchie G., LavensP.,DhertPh. Dietary ascorbic acid requirements during the hatchery production of turbot larvae. Journal of Fish Biology. 1996. Р. 573-583.
7. Fushimi T. The food for fish larval of the Artemia. Bulletin of Japanese Society of Scientific Fisheries. 1975. Vol. 47, № 5. P. 67 - 83.
8. Romdhane M.S., Devresse P., Leger P., Sorgeloos P. Effect of feeding omega 3 HUFA enriched Artemia during a progressively increasing period on the larviculture of the fresh water prawn Macrobrachium rosenbergii. Journal of Aquaculture Research. 1994. P. 581.
9. Fashtomi H.R.P., Mohseni M. Survival and growth of larval and juvenile Persian sturgeon (Acipenser persicus) using formulated diets and live food // Journal of Applied Ichthyology. 2006. Vol. 22. P. 303–306.
10. Прусиньска М., Чепуркина М.А. Кормление натуральным кормом осетров на ювенальных стадиях развития. Проблемы выращивания ювенальных стадий осетровых рыб, Ольштын, 2011. С. 23-33.
11. Чепуркина М.А. Сохранение биоресурсов осетровых видов рыб Обь-Иртышского бассейна путем искусственного воспроизводства с использованием геотермальных вод: Автореферат диссерт. Насоиск. уч. степениканд. биол. наук. Новосибирск, 2010. 20 с.
12. Tamaru C.S., Ako H., Paguirigan R., Pang L. Enrichment of Artemia for use of Ornamental Fish Production // Center of Tropical and Subtropical Aquaculture Publication, USA / Journal of Aquaculture. № 133. 2000. Р. 48-54.
13. Lakshmana Senthil S., Maruthu Pandi T., Ajith Kumar T.T., Nandhini Devi K., Balasubramanian T. Exigent of Micro Algae for the Enrichment of Artemia salina // Journal of Aquaculture Feed Science and Nutrition 4 (2). 2012. P. 34-38.
14. De Wolf T., Candreva P. Prolonged Artemia enrichment: an easy tool to reduce the Artemia consumption in marine finfish hatcheries // 3rd fish and Shellfish Larviculture Symposium “Larvi 2001”. Oostende, Belgium, 2001. P. 153-156.
15. Naz M. The changes in the biochemical compositions an enzymetic activities of rotifer (Brahionus plicatilis Müller) and Artemia during the Enrichment and starvation periods // Springer. Fish Physiol. Biochem. № 34. 2008. P. 391-404.
16. Djousse L., Arnett D.K., Carr J.J., et al. Dietary Linolenic Acid Is Inversely Associated With Calcined Atherosclerotic Plaque in the Coronary Arteries. Circulation. 2005. Vol. 111. P. 2921-2926.
17. Hannah С., Mani M., Ramasamy R. Evaluation of the Biochemical Composition of Four Marine Algae and Its Nutritional Value for Brine Shrimp // Journal of Pharmacy and Biological Sciences. Vol. 6, Issue 3. 2013. P. 47-51.